Desvelado el mayor catálogo de nuevas moléculas antibióticas: casi un millón de compuestos desconocidos
El español César de la Fuente y el portugués Luis Pedro Coelho revelan con computación aplicada a la biología un potencial arsenal contra la resistencia de los microorganismos a los fármacos existentes

https://elpais.com/ciencia/2024-06-05/desvelado-el-mayor-catalogo-de-nuevas-moleculas-antibioticas-casi-un-millon-de-compuestos-desconocidos.html
Cuando el francés Ernest Duchesne halló la penicilina en 1897 y la redescubrió Alexander Fleming en 1928, la salud de la humanidad dio un paso de gigante. Por primera vez, las posibilidades de morir por una infección descendían drásticamente. Sin embargo, el uso y abuso de antibióticos en los últimos 100 años ha enseñado a los patógenos microbianos a desarrollar defensas frente a la mejor arma farmacológica. Cada año, según The Lancet, casi cinco millones de personas mueren por microorganismos resistentes a los antibióticos actuales y es imprescindible encontrar nuevas moléculas efectivas. En esta lucha ineludible, los laboratorios del español César de la Fuente en la Universidad de Pensilvania y del portugués Luis Pedro Coelho en la Universidad de Tecnología de Queensland han descubierto, según publican en Cell, la mayor cantera del mundo (863.498 péptidos) de antimicrobianos a partir de los cuales se pueden desarrollar nuevos tratamientos.
Los investigadores han recurrido a la inteligencia artificial y al aprendizaje mecánico (machine learning) para rebuscar en cualquier parte —en el cuerpo humano (saliva o piel), animales (intestinos de los cerdos o corales), plantas, tierra, agua o seres extintos— una combinación de aminoácidos que tengan potencial antibiótico. Es lo que se conoce como materia oscura microbiana, microorganismos que han dejado material genético en cualquier medio, pero que aún no se han cultivado en laboratorio.
Del casi millón de moléculas halladas, nueve de cada 10 son inéditas y han tenido que ser bautizadas, como la lachnospirina y enterococcina, las más efectivas. “Nunca se habían descrito”, resalta De la Fuente. De esa ingente cantidad han conseguido probar un centenar a nivel preclínico (placas de Petri y ratones) en 11 cepas bacterianas causantes de enfermedades, incluidas cepas resistentes a los antibióticos de E. coli y Staphylococcus aureus. “Nuestra evaluación inicial reveló que 63 de estos candidatos erradicaron por completo el crecimiento de, al menos, uno de los patógenos probados y, a menudo, de múltiples cepas. En algunos casos, estas moléculas fueron efectivas contra las bacterias en dosis muy bajas”, explica el investigador coruñés, recientemente premiado en su tierra.
En un modelo preclínico probado en ratones infectados, el tratamiento con los nuevos péptidos produjo resultados similares a los efectos de la polimixina B, un antibiótico usado como control y disponible comercialmente que se utiliza para tratar la meningitis, la neumonía, la sepsis y las infecciones del tracto urinario.
Que ambos investigadores sean biotecnólogos ha permitido reducir a meses procesos que tardaban hasta una década. De esta forma, sus equipos analizaron bases de datos de 87.920 genomas de microbios y 63.410 metagenomas (mezclas de estos). Buscaban combinaciones de aminoácidos desconocidas para los patógenos que han desarrollado resistencia a los antibióticos actuales y responsables de lo que la Organización Mundial de la Salud considera una de las 10 principales amenazas de la humanidad.
El equipo ha publicado todos los hallazgos, agrupados bajo el nombre AMPSphere (esfera de péptidos antimicrobianos), en una plataforma de código abierto para permitir la investigación a partir de sus hallazgos a cualquier entidad interesada en desarrollar nuevos antibióticos. La idea es superar la tendencia de la industria farmacéutica a centrarse más en tratamientos de enfermedades crónicas, de uso prolongado y más rentables.
Llevo toda mi carrera dedicada a los antibióticos, porque es una de las áreas que tiene menos inversión y que mata a más gente en el mundo. Simplemente, mi sueño es intentar ayudar a la humanidad, salvar vidas. Y para mí es lo más importante, más que ganar dineroCésar de la Fuente, Universidad de Pensilvania
“Llevo toda mi carrera dedicada a los antibióticos, porque es una de las áreas que tiene menos inversión y que mata a más gente en el mundo. Simplemente, mi sueño es intentar ayudar a la humanidad, salvar vidas. Y para mí es lo más importante, más que ganar dinero”, afirma De la Fuente, quien promueve la creación de una empresa surgida de su laboratorio en la Universidad de Pensilvania para acelerar los desarrollos de nuevos antibióticos.
“Hay una necesidad urgente de nuevos métodos para el descubrimiento de antibióticos. Usar la inteligencia artificial para comprender y aprovechar el poder del microbioma mundial nos lleva a investigaciones innovadoras que mejoran la salud pública”, añade Coelho, cuya colaboración ha sido, en opinión de De la Fuente, extraordinaria.
“Estamos orgullosos de esta investigación porque creemos que es el proyecto de descubrimiento de antibióticos más grande que se ha escrito en cuanto a la cantidad de información biológica que hemos explorado y la de moléculas que hemos encontrado nuevas. Es una representación muy completa de toda la increíble diversidad microbiana que existe”, resalta el investigador gallego.
De la Fuente detalla cómo el hallazgo procede de una novedosa forma de aproximarse al problema global y urgente de la resistencia a los antibióticos: “Yo pienso en la biología como una fuente de información en forma de ADN, de nucleótidos, de proteínas o de aminoácidos. Con los ordenadores podemos entrar como con una lupa y explorar toda esa diversidad oculta al ojo humano y codificada de forma tan compleja e ingente”.
Con modelos mucho más humildes, otros investigadores trabajan en la misma dirección y bajo la misma premisa: la lucha contra una amenaza global. Una investigación en The Microbe, ha analizado las comunidades bacterianas y de arqueas (organismos procariotas que tienen apariencia de bacterias) en los baños romanos de la ciudad británica de Bath. “Esta es una investigación muy emocionante. La resistencia a los antimicrobianos es reconocida como una de las amenazas más importantes para la salud mundial y la búsqueda de nuevos productos naturales antimicrobianos se está acelerando. Nuestro estudio ha desvelado, por primera vez, que algunos de los microorganismos presentes en las Termas Romanas son una fuente potencial de nuevos descubrimientos antimicrobianos. Las termas romanas han sido consideradas medicinales durante mucho tiempo y ahora, gracias a los avances de la ciencia moderna, descubrimos que los romanos y otros tenían razón”, comenta Lee Hutt, autor principal del trabajo e investigador de la Universidad de Plymouth.
Otra línea de investigación se dirige no solo a descubrir nuevos antibióticos, sino que estos no impliquen efectos indeseados. El tratamiento con la conocida amoxicilina y clindamicina provoca cambios en la estructura general de las poblaciones bacterianas en el intestino, disminuyendo la abundancia de varios grupos microbianos beneficiosos, según detalla un equipo de investigadores de la Universidad de Illinois Urbana-Champaign en Nature. Los investigadores han probado en ratones un nuevo antibiótico. “La lolamicina”, como se denomina el nuevo compuesto, “no causa ningún cambio drástico en la composición taxonómica en el transcurso del tratamiento de tres días o la recuperación de los siguientes 28 días”, sostienen los investigadores.
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https://notistecnicas.blogspot.com/2024/05/asi-se-crean-antibioticos-con.html
Discovery of antimicrobial peptides in the global microbiome with machine learning
https://www.cell.com/cell/fulltext/S0092-8674(24)00522-1#secsectitle0015
Highlights
- •Machine learning predicts nearly 1 million new antibiotics in the global microbiome
- •Out of 100 tested peptides, 79 were active in vitro; 63 of these targeted pathogens
- •Some peptides may originate from longer sequences through genomic fragmentation
- •The AMPSphere is an open-access resource to accelerate antibiotic discovery
Summary
Graphical abstract
Keywords
Introduction
Results
AMPSphere comprises almost 1 million c_AMPs from several habitats





c_AMPs are rare and habitat-specific
Mutations in larger genes generate c_AMPs as independent genomic entities

c_AMP genes may arise after gene duplication events

Most c_AMPs are members of the accessory pangenome

More transmissible species have lower c_AMP density
Physicochemical features and secondary structure of AMPs

Validation of c_AMPs as potent antimicrobials through in vitro assays

The growth of human gut commensals is impaired by c_AMPs
Permeabilization and depolarization of the bacterial membrane by c_AMPs from AMPSphere
AMPs exhibit anti-infective efficacy in a mouse model

Discussion
Limitations of the study
STAR★Methods
Key resources table
| REAGENT or RESOURCE | SOURCE | IDENTIFIER |
|---|---|---|
| Bacterial and virus strains | ||
| Acinetobacter baumannii | American Type Culture Collection | ATCC 19606 |
| Escherichia coli | American Type Culture Collection | ATCC 11775 |
| Escherichia coli | Escherichia coli MG1655 phnE_2:FRT | AIC221 |
| Escherichia coli | Escherichia coli MG1655 pmrA53 phnE_2:FRT (polymyxin-resistant; colistin-resistant strain) | AIC222 |
| Klebsiella pneumoniae | American Type Culture Collection | ATCC 13883 |
| Pseudomonas aeruginosa | N/A | PAO1 |
| Pseudomonas aeruginosa | N/A | PA14 |
| Staphylococcus aureus | American Type Culture Collection | ATCC 12600 |
| Staphylococcus aureus | American Type Culture Collection | ATCC BAA-1556 (methicillin-resistant strain) |
| Akkermansia muciniphila | American Type Culture Collection | ATCC BAA-635 |
| Bacteroides fragilis | American Type Culture Collection | ATCC 25285 |
| Bacteroides thetaiotaomicron | American Type Culture Collection | ATCC 29148 |
| Bacteroides uniformis | American Type Culture Collection | ATCC 8492 |
| Bacteroides vulgatus (Phocaeicola vulgatus) | American Type Culture Collection | ATCC 8482 |
| Collinsella aerofaciens | American Type Culture Collection | ATCC 25986 |
| Clostridium scindens | American Type Culture Collection | ATCC 35704 |
| Parabacteroides distasonis | American Type Culture Collection | ATCC 8503 |
| Chemicals, peptides, and recombinant proteins | ||
| Luria-Bertani broth | BD | 244620 |
| Tryptic soy broth | Sigma | T8907-1KG |
| Agar | Sigma | 05039 |
| MacConkey agar | RPI | M42560–500.0 |
| Phosphate buffer saline | Sigma | P3913-10PAK |
| Glucose | Sigma | G5767 |
| 1-(N-phenylamino)naphthalene | Sigma | 104043 |
| 3,3′-dipropylthiadicarbocyanine iodide | Sigma | 43608 |
| HEPES | Fisher | BP310-100 |
| Potassium chloride (KCl) | Sigma | P3911 |
| Deposited data | ||
| Code for generation of AMPSphere | This study | https://doi.org/10.5281/zenodo.11055585 |
| AMPSphere database | This study | https://zenodo.org/record/4606582 |
| Experimental models: Organisms/strains | ||
| Mouse: CD-1 | Charles River | 18679700–022 |
| Software and algorithms | ||
| NGLess 1.3.0 | Coelho et al. | https://github.com/ngless-toolkit/ngless |
| JUG 2.1.1 | Coelho | https://github.com/luispedro/jug |
| Prodigal 2.6.3 | Hyatt et al. | https://github.com/hyattpd/Prodigal |
| Macrel v.1.0.0 | Santos-Júnior et al. | https://github.com/BigDataBiology/macrel |
| CDHit 4.8.1 | Fu et al. | https://github.com/weizhongli/cdhit |
| MMseqs2 | Steinegger and Söding | https://github.com/soedinglab/MMseqs2 |
| python 3.8.2 | Van Rossum | https://www.python.org/ |
| matplotlib 3.4.3 | Hunter | https://matplotlib.org/ |
| numpy 1.21.2 | Harris et al. | https://numpy.org/ |
| pandas 1.3.2 | McKinney | https://pandas.pydata.org/ |
| plotly 5.2.1 | Plotly Technologies Inc, 2015 | https://plot.ly |
| scipy 1.7.1 | Virtanen et al. | https://www.scipy.org |
| scikit-learn 0.24 | Pedregosa et al. | https://scikit-learn.org/ |
| scikit-bio 0.5.6 | The scikit-bio development team, 2020 | http://scikit-bio.org/ |
| BioPython 1.7.9 | Cock et al. | https://biopython.org/ |
| eggnog-mapper v2 | Cantalapiedra et al. | https://github.com/eggnogdb/eggnog-mapper |
| HMMer 3.3+dfsg2-1 | Eddy | http://hmmer.org/ |
| FastTree 2.1 | Price et al. | http://www.microbesonline.org/fasttree/ |
| FastANI v.1.33 | Jain et al. | https://github.com/ParBLiSS/FastANI |
| Megahit 1.2.9 | Li et al. | https://github.com/voutcn/megahit/ |
| AMPlify | Li et al. | https://github.com/bcgsc/AMPlify |
| Ampir | Fingerhut et al. | https://github.com/Legana/ampir |
| AMPScanner v2 | Veltri et al. | https://www.dveltri.com/ascan/v2/ascan.html |
| APIN | Su et al. | https://github.com/zhanglabNKU/APIN |
| amPEPpy 1.0 | Lawrence et al. | https://github.com/tlawrence3/amPEPpy |
| AI4AMP | Lin et al. | https://github.com/LinTzuTang/AI4AMP_predictor |
| RNAcode 0.2-beta | Washietl et al. | https://github.com/ViennaRNA/RNAcode |
| Bwa v.0.7.17 | Li et al. | https://github.com/lh3/bwa |
| Statsmodels 0.14.0 | Seabold and Perktold | https://www.statsmodels.org |
| mOTUs2 | Milanese et al. | https://github.com/motu-tool/mOTUs |
| SAMtools 1.18 | Li et al. | https://github.com/samtools/samtools |
| BEDtools v2.31.0 | Quinlan and Hall | https://github.com/arq5x/bedtools2 |
| Clustal Omega 1.2.2 | Sievers et al. | http://clustal.org/omega/ |
| Diamond v2.1.8 | Buchfink et al. | https://github.com/bbuchfink/diamond |
| Blast+ 2.13.0 | Camacho et al. | https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/doc/blast-help/downloadblastdata.html |
| Other | ||
| ProGenomes2 | Mende et al. | http://progenomes.embl.de/ |
| DRAMP - Data repository of antimicrobial peptides 3.0 | Shi et al. | http://dramp.cpu-bioinfor.org/ |
| UniprotKB 2021_03 | The UniProt Consortium | https://www.uniprot.org/ |
| Eggnog v.5.0 | Huerta-Cepas et al. | http://eggnog5.embl.de/ |
| SmProt database v.2.0 | Hao et al. | http://bigdata.ibp.ac.cn/SmProt/index.html |
| StarPep45k | Aguilera-Mendoza et al. | http://mobiosd-hub.com/starpep |
| PFAM 33.1. | Mistry et al. | http://pfam.xfam.org/ |
| AntiFAM v.7.0 | Eberhardt et al. | https://www.ebi.ac.uk/research/bateman/software/antifam-tool-identify-spurious-proteins |
| GTDB 07-RS95 | Parks et al., | https://gtdb.ecogenomic.org/ |
| NCBI release 207 | NCBI Resource Coordinators | https://ftp.ncbi.nih.gov/refseq/release/ |
| Database of Antimicrobial Activity and Structure of Peptides - DBAASP | Pirtskhalava et al. | https://dbaasp.org/home |
| Antimicrobial peptides database - APD3 | Wang and Wang | https://aps.unmc.edu/ |
| Salmonella Typhimurium small ORFs - STsORFs | Venturini et al. | https://academic.oup.com/microlife/article/1/1/uqaa002/5928550#supplementary-data |
| CARD - Comprehensive Antibiotic Resistance Database | Alcock et al. | https://card.mcmaster.ca/ |
| Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG) release 102 | Kanehisa et al. | https://www.genome.jp/kegg/ |
| Biosamples database | Courtot et al. | http://www.ebi.ac.uk/biosamples |
| European Nucleotide Archive - ENA | Harrison et al. | https://www.ebi.ac.uk/ena |
| Proteomics Identification Database - PRIDE | Jones et al. | https://www.ebi.ac.uk/pride/ |
Resource availability
Lead contact
Materials availability
Data and code availability
- •Metagenomes and Genomes data are publicly available at the European Nucleotide Archives (ENA) as of the date of publication. Their accession numbers are listed in Table S1. AMPSphere is available as a public online resource (https://ampsphere.big-data-biology.org/), and its files have been deposited in Zenodo and are publicly available as of the date of publication. DOIs are listed in the key resources table.
- •All original code has been deposited at Zenodo and is publicly available as of the date of publication. DOIs are listed in the key resources table.
- •Any additional information required to reanalyze the data reported in this paper is available from the lead contact upon request.
Experimental model and study participant details
Bacterial strains and growth conditions
Skin abscess infection mouse model
Method details
Selection of microbial (meta)genomes
Reads trimming and assembly
smORF and AMP prediction
Clustering of AMP families
Quality control of c_AMPs
Sample-based c_AMPs accumulation curves
Multi-habitat and rare c_AMPs
Testing c_AMPs overlap across habitats
c_AMP density in microbial species
c_AMPs and bacterial species transmissibility
Determination of accessory AMPs
Annotation of AMPs using different datasets
Genomic context conservation analysis
AMPSphere web resource
Peptide selection for synthesis and testing
Minimal inhibitory concentration (MIC) determination
Circular dichroism assays
Outer membrane permeabilization assays
Cytoplasmic membrane depolarization assays
Quantification and statistical analysis
Additional resources
Acknowledgments
Author contributions
Declaration of interests
Supplemental information
- Table S1. Metadata and description of (meta)genomes used in AMPSphere, related to Figure 1
The sample is identified by its access code in the European Nucleotide Archive (ENA), and the habitat shows the type of habitat this sample was retrieved from. Other data about the sequencing, such as the number of raw inserts and the number of assembled base pairs (bp), are also available along with the information on N50. The number of predicted complete large ORFs (>100 amino acids) and smORFs (10–100 amino acids) is shown (ORFs+smORFs) along with the number of smORFs alone and the predicted non-redundant c_AMPs.
- Table S2. c_AMP distribution in the habitat groups, related to Figure 1
The habitats grouped under each class are shown along with the number of genes encoding the non-redundant c_AMPs, the number of c_AMP clusters in total, and the number of clusters containing ≥8 c_AMPs (c_AMP families).
- Table S3. Ortholog groups (OGs) enrichment in the hits to the GMGCv1, related to Figure 3
Top hits were assessed, and the proportion of OGs from eggNOG 5
was compared using the number of c_AMPs affiliating to homologs of a given OG and the total number of OGs found in the homologs of c_AMPs (156,711) in comparison to the GMGCv1. As a background measure, we used the counts of a given OG in the redundant set of genes belonging to GMGCv1 and the total number of OGs found in the redundant GMGCv1 catalog (9,180,087,363). Enrichment in the c_AMPs set was given as the fold-change calculated for each given OG in relation to that expected in the GMGCv1. p values were adjusted using Holm-Sidak, and only significant hits (p < 0.05) were shown.
- Table S4. c_AMP genome context in comparison to families with proteins of different sizes, related to Figure 4
Proportion of protein families and AMPs with two or more members showing conserved genomic context involving different KEGG pathways, shown with their accession code and description. This table provides a comparison across the protein families of all sizes, small proteins (<50 amino acids), the set of AMPs passing in all quality tests, the set of AMPs passing all quality tests except for the experimental evidence, and all AMPs.
- Table S5. AMPs with conserved genome contexts sharing KEGG ortholog groups (KO) with gene neighbors, related to Figure 4
AMPs were annotated with eggNOG mapper,
and those harboring KOs were included in this analysis. For each AMP showing the same KO annotation as their neighboring genes, we provide the KO annotation, the relative position of the homolog neighbor, and a description of the function of the KO.
- Table S6. Metatranscriptomes and metaproteomes used in the verification for experimental signals of transcription and/or translation of c_AMP genes from AMPSphere, related to STAR Methods section “Quality control of c_AMPs”
Metatranscriptomes from EMBL-ENA were used for transcription of c_AMPs. Datasets from the Proteomics Identification Database (PRIDE)
EMBL-EBI were also used to identify translated peptides.
References
- Next-generation precision antimicrobials: towards personalized treatment of infectious diseases.Curr. Opin. Microbiol. 2017; 37: 95-102https://doi.org/10.1016/j.mib.2017.05.014
- Global burden of bacterial antimicrobial resistance in 2019: a systematic analysis.Lancet. 2022; 399: 629-655https://doi.org/10.1016/S0140-6736(21)02724-0
- A Deep Learning Approach to Antibiotic Discovery.Cell. 2020; 180: 688-702.e13https://doi.org/10.1016/j.cell.2020.01.021
- Mining for encrypted peptide antibiotics in the human proteome.Nat. Biomed. Eng. 2022; 6: 67-75https://doi.org/10.1038/s41551-021-00801-1
- In silico optimization of a guava antimicrobial peptide enables combinatorial exploration for peptide design.Nat. Commun. 2018; 9: 1490https://doi.org/10.1038/s41467-018-03746-3
- Identification of antimicrobial peptides from the human gut microbiome using deep learning.Nat. Biotechnol. 2022; 40: 921-931https://doi.org/10.1038/s41587-022-01226-0
- Leveraging artificial intelligence in the fight against infectious diseases.Science. 2023; 381: 164-170https://doi.org/10.1126/science.adh1114
- Deep learning tools to accelerate antibiotic discovery.Expert Opin. Drug Discov. 2023; 18: 1245-1257https://doi.org/10.1080/17460441.2023.2250721
- Toward computer-made artificial antibiotics.Curr. Opin. Microbiol. 2019; 51: 30-38https://doi.org/10.1016/j.mib.2019.03.004
- Molecular de-extinction of ancient antimicrobial peptides enabled by machine learning.Cell Host Microbe. 2023; 31: 1260-1274.e6https://doi.org/10.1016/j.chom.2023.07.001
- Halocin C8: an antimicrobial peptide distributed among four halophilic archaeal genera: Natrinema, Haloterrigena, Haloferax, and Halobacterium.Extremophiles. 2017; 21: 623-638https://doi.org/10.1007/s00792-017-0931-5
- Bacteriocins — a viable alternative to antibiotics?.Nat. Rev. Microbiol. 2013; 11: 95-105https://doi.org/10.1038/nrmicro2937
- Characterization of the secondary metabolite biosynthetic gene clusters in archaea.Comput. Biol. Chem. 2019; 78: 165-169https://doi.org/10.1016/j.compbiolchem.2018.11.019
- Antimicrobial Peptides of Multicellular Organisms: My Perspective.in: Matsuzaki K. Antimicrobial Peptides: Basics for Clinical Application. Springer Singapore, 2019: 3-6https://doi.org/10.1007/978-981-13-3588-4_1
- Identification of natural antimicrobial peptides from bacteria through metagenomic and metatranscriptomic analysis of high-throughput transcriptome data of Taiwanese oolong teas.BMC Syst. Biol. 2017; 11131https://doi.org/10.1186/s12918-017-0503-4
- Peptide Design Principles for Antimicrobial Applications.J. Mol. Biol. 2019; 431: 3547-3567https://doi.org/10.1016/j.jmb.2018.12.015
- Cryptic Antimicrobial Peptides: Identification Methods and Current Knowledge of their Immunomodulatory Properties.Curr. Pharm. Des. 2018; 24: 1054-1066https://doi.org/10.2174/1381612824666180327165012
- How nature morphs peptide scaffolds into antibiotics.Chembiochem. 2009; 10: 34-53https://doi.org/10.1002/cbic.200800438
- Ribosomally synthesized peptides from natural sources.J. Antibiot. 2014; 67: 277-289https://doi.org/10.1038/ja.2013.138
- Bacterial antagonism in host-associated microbial communities.Science. 2018; 361eaat2456https://doi.org/10.1126/science.aat2456
- Shigella sonnei encodes a functional T6SS used for interbacterial competition and niche occupancy.Cell Host Microbe. 2017; 21: 769-776.e3https://doi.org/10.1016/j.chom.2017.05.004
- The commensal lifestyle of Staphylococcus aureus and its interactions with the nasal microbiota.Nat. Rev. Microbiol. 2017; 15: 675-687https://doi.org/10.1038/nrmicro.2017.104
- Antagonism toward the intestinal microbiota and its effect on Vibrio cholerae virulence.Science. 2018; 359: 210-213https://doi.org/10.1126/science.aap8775
- Listeriolysin S is a streptolysin s-like virulence factor that targets exclusively prokaryotic cells in vivo.mBio. 2017; 8e00259-17https://doi.org/10.1128/mBio.00259-17
- Bacteriocin from epidemic Listeria strains alters the host intestinal microbiota to favor infection.Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2016; 113: 5706-5711https://doi.org/10.1073/pnas.1523899113
- Designing improved active peptides for therapeutic approaches against infectious diseases.Biotechnol. Adv. 2018; 36: 415-429https://doi.org/10.1016/j.biotechadv.2018.01.004
- Synthetic Antimicrobial Immunomodulatory Peptides: Ongoing Studies and Clinical Trials.Antibiotics (Basel). 2022; 11: 1062https://doi.org/10.3390/antibiotics11081062


